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工艺从小试到放大时kLa和kLaCO2分别是如何变化的,为什么?

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工艺从小试到放大时kLa和kLaCO2分别是如何变化的,为什么? 第1张

工艺从小试到放大时kLa和kLaCO2分别是如何变化的,为什么? 第2张

图片来源:sartorius官网

细胞培养的小试工艺确定后,如何保证规模扩大后细胞生长、产品产量及质量的稳定性是一个新的考验。简单的说,工艺放大主要是保证细胞所处环境一致,其中良好的传质是个重要的先决条件。为保证放大后传质效果一样,细胞培养工艺从小试转移到中试甚至生产时,常依据一些参数进行放大,如P/V、Mixing time、kLa和kLaCO2等。

 

在上面提到的四个因素中,kLa和kLaCO2分别为体系中O2和CO2的传质系数,即两者的传质效果。kLa,表征氧气从气相进入到液相的速率,但由于氧气在水中的低溶解度,氧气传质速率(OTR)一直是好氧微生物培养的重要参数。反应器中合适的kLa是工艺放大的关键,O2作为细胞的重要营养物质,影响细胞的正常生长及代谢,工业生产中一般将O2浓度控制在40%。

 

细胞培养过程中体系中会积累CO2,其主要来源于葡萄糖及氨基酸代谢,通常用pCO2 (mmHg)表示体系中CO2的累积量。不同细胞系的最佳pCO2均不同,当体系中CO2累积增加导致pCO2升高时不仅对细胞生长和蛋白产生影响,而且还会影响蛋白的质量如糖基化水平等。对此不同的学者均有研究,Gray等观察到高水平的pCO2 (>105 mmHg)会对细胞生长及蛋白产量产生抑制;Kimura等就36-250 mmHg的pCO2对MT2-1-8 CHO细胞生长进行了研究,发现250 mmHg的pCO2下细胞的比生长速率降低了30%;Matthias Brunner等在研究pH,pO2和pCO2对细胞生长和关键质量的影响中发现,pH和pCO2交互作用对N-乙酰葡萄糖氨基、半乳糖基化、唾液酸化、岩藻糖化的影响显著,pCO2对单抗电荷修饰(如天冬酰胺脱酰胺作用和天冬氨酸异构化)的影响显著的。由此可知,如何避免体系中CO2的累积,工艺开发时如何移除CO2就需要着重进行考虑。与kLa类似,kLaCO2 (CO2的传质系数)可以用来表征体系中CO2的移除能力。

 

工艺开发阶段体系中kLa和kLaCO2均可以达到要求,二者可以说是步调一致,但是随着培养规模的扩大情形就有所改变。Naoki Matsunaga的团队研究了不同培养规模反应器(80L,500L,2000L和10,000L)的O2供给与CO2移除能力,即kLa和kLaCO2,结果如下图。

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不同规模反应器中、不同VVM以及不同搅拌桨线速度时的kLa和kLaCO2(图表来源参考文献1)

 

从上图中的FIG.4可以得出,随着培养规模的扩大,kLa的呈增加的趋势。同样条件下,kLaCO2虽然也有所增加,但是没有kLa增加的程度大,见上图FIG.5。除上面测的kLa值外,观察培养过程中O2的消耗也可以看出kLa是随工艺放大的增加,见下表。表中80L、500L和2000L的细胞接种密度一致,均为2.0*105 cells/mL,DO控制也一致,且培养过程中细胞生长曲线类似。在其他条件相似的情况下,放大过程中耗氧量反而下降,从647L降低至297L,这表明随培养规模的放大O2的传质能力增加,即kLa随培养规模增加而增加。

工艺从小试到放大时kLa和kLaCO2分别是如何变化的,为什么? 第4张

图表来源参考文献1

 

既然Naoki Matsunaga的研究表明,工艺从小试向中试转移或从中试向生产转移过程中,kLa和kLaCO2均是增加的。那么工艺放大时可以不用考虑O2供给与CO2移除吗,尽可放心的进行放大?实则不然。

 

虽然kLa和kLaCO2均是增加的,但是二者增加的比例是不同的,并且不同规模下kLa相同时kLaCO2也有较大区别。如果将上面的FIG.4和FIG.5中的b图拿出来进行比较,就不难发现这点。

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搅拌线速度相同时不同规模下的kLa和kLaCO2比较(图表来源参考文献1)

 

在上图中,对相同的通气条件下(vvm相同)500L和2000L的kLa和kLaCO2进行比较。反应器规模为500L时,其kLa为0.7h-1,而kLaCO2为0.3h-1;反应器规模为2000 L时,其kLa为0.7h-1,而kLaCO2为0.2h-1;即同等条件下,kLa和kLaCO2的差别较大,kLaCO2还不能达到kLa的一半。而且,当反应器规模不同时(500 L、2000 L),kLa为0.7h-1时,500 L的kLaCO2为0.3h-1,2000L的kLaCO2为0.2h-1;即在放大时维持kLa相同时,kLaCO2也是随着反应器规模扩大而降低的。

 

是什么原因造成了放大时kLa增加,kLaCO2反而降低?可以从下面的模型中进行简单理解,其中相关的数据并不准确。向反应器中通入纯氧时,气泡在上升过程中与培养基发生传质,气泡中的氧含量不断降低。反应器规模越大,气泡在培养基中的停留时间越长,则更多的氧气从气泡中进入培养基,气泡的含氧量就越低,即反应器规模扩大时kLa会增加。

 

与O2相反的是,CO2的移除是从培养基中进入气泡中,其传质方向不同。同样的底部通气策略时(相同的vvm),由于大反应器中的氧气需求降低(反应器从80L到2000L,需氧量从647L降低至297L),没有同等比例的气泡将反应器中多余的CO2移除。并且,气泡上升过程中CO2不是一直从液相传质到气相的,其分为两个阶段:传质和平衡,最终气泡中的CO2是一定的,不会随着高度而增加。反应器规模扩大时kLaCO2反而降低。

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由此可以得出,工艺放大时kLa会增加,kLaCO2反而降低。与小试相比,反应器放大时低kLaCO2导致CO2累积增加,pCO2增加。如下图所示,5L、20L和5000L中的CO2含量随着培养规模增加而增加。

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图表来源参考文献2

CO2过量累积对细胞生长及蛋白质量均有不利影响,如何增加体系中的CO2的移除率,可以从反应器放大中缺失的通氧量入手。Naoki Matsunaga的研究中对不同vvm时的kLaCO2进行了测定,实验表明增加vvm可以增加kLaCO2,即提高vvm可以加快移除CO2,从而控制体系的CO2含量在可授受范围内。值得注意的是提高vvm时会伴随着体系中泡沫数量,所以此时还应将泡沫情况考虑在内。

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不同vvm时的kLaCO2值(图表来源参考文献1)

 

参考文献:

1. Culturescale-up studies as seen from the viewpoint of oxygen supply and dissolved carbondioxide stripping;

2. Scale-UpAnalysis for a CHO Cell Culture Process in Large-Scale Bioreactors;

3. BioreactorScale-Up and Oxygen Transfer Rate in Microbial Processes: An Overview。

           


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